Облепиха в эндодонтии: систематический обзор антимикробной активности в отношении Enterococcus faecalis при инфекциях системы корневых каналов зубов

ЦЕЛЬ. Enterococcus faecalis – грамположительная факультативно-анаэробная бактерия, широко признанная основным возбудителем персистирующих и вторичных эндодонтических инфекций благодаря своей исключительной способности проникать в дентинные канальцы, формировать устойчивые биопленки и выживать в неблагоприятных щелочных условиях с ограниченным количеством питательных веществ. Несмотря на высокую эффективность традиционных химических ирригантов, таких как гипохлорит натрия и хлоргексидин, их применение связано с цитотоксичностью и рядом нежелательных побочных эффектов. Облепиха (Hippophae rhamnoides L.) представляет собой лекарственное растение, обладающее значительным потенциалом в качестве природного антимикробного средства благодаря высокому содержанию флавоноидов, полифенолов, каротиноидов и ненасыщенных жирных кислот. Целью данного обзора является обобщение и анализ существующих данных об антимикробной эффективности облепихи против E. faecalis, механизмах ее действия и клиническом потенциале в лечении инфекций корневых каналов.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ. Поиск литературы был проведен в базах данных PubMed, Embase и Cochrane Library. В обзор были включены англоязычные публикации, посвященные фитохимическим, микробиологическим, in vitro и in vivo исследованиям, связанным с применением производных облепихи в стоматологии и эндодонтии.

РЕЗУЛЬТАТЫ. Экстракты облепихи демонстрируют широкий спектр антимикробной активности, обусловленной присутствием биологически активных соединений, таких как кверцетин, кемпферол, изорамнетин, пальмитолеиновая кислота и аскорбиновая кислота. К основным механизмам антибактериального действия относятся нарушение целостности клеточных мембран бактерий, ингибирование формирования биопленок, подавление продукции кислот и модуляция воспалительного ответа организма хозяина. Водные и водно-спиртовые экстракты листьев облепихи продемонстрировали способность подавлять рост E. faecalis, тогда как препараты на основе масла мякоти плодов проявляли выраженную антибиопленочную активность в отношении различных оральных патогенов. Сравнительные исследования свидетельствуют о сопоставимой, а в ряде случаев и более высокой эффективности по сравнению с хлоргексидином, при значительно лучшей биосовместимости.

ВЫВОДЫ. Облепиха является биосовместимым многофункциональным средством, которое может рассматриваться в качестве дополнительного эндодонтического ирриганта или внутриканального лекарственного препарата. Однако для ее внедрения в повседневную клиническую практику необходимы стандартизация методов экстракции, определение оптимальных концентраций и проведение качественно спланированных рандомизированных клинических исследований.

1. Singh N., Shenvi S. Navigating the C-shape canals: A case series on endodontic treatment with bio-ceramic sealers. Oral Sphere J Dent Health Sci. 2025;1(3):166–172. https://doi.org/10.63150/osjdhs.2025.14

2. Zhang C., Du J., Peng Z. Correlation between enterococcus faecalis and persistent intraradicular infection compared with primary intraradicular infection: A systematic review. J Endod. 2015;41(8):1207–1213. https://doi.org/10.1016/j.joen.2015.04.008

3. Komiyama E.Y., Lepesqueur L.S., Yassuda C.G., Samaranayake L.P., Parahitiyawa N.B., Balducci I., Koga-Ito C.Y. Enterococcus species in the oral cavity: prevalence, virulence factors and antimicrobial susceptibility. PLoS ONE. 2016;11(9):e0163001. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0163001

4. Alghamdi F., Shakir M. The influence of enterococcus faecalis as a dental root canal pathogen on endodontic treatment: A systematic review. Cureus. 2020;12(3):e7257. https://doi.org/10.7759/cureus.7257

5. Ch’ng J.H., Chong K.K.L., Lam L.N., Wong J.J., Kline K.A. Biofilm-associated infection by enterococci. Nat Rev Microbiol. 2019;17(2):82–94. https://doi.org/10.1038/s41579-018-0107-z (Erratum in: Nat Rev Microbiol. 2019;17(2):124. https://doi.org/10.1038/s41579-018-0128-7).

6. Barbosa-Ribeiro M., De-Jesus-Soares A., Zaia A.A., Ferraz C.C., Almeida J.F., Gomes B.P. Antimicrobial susceptibility and characterization of virulence genes of enterococcus faecalis isolates from teeth with failure of the endodontic treatment. J Endod. 2016;42(7):1022–1028. https://doi.org/10.1016/j.joen.2016.03.015

7. Haapasalo M., Shen Y., Wang Z., Gao Y. Irrigation in endodontics. Br Dent J. 2014;216(6):299–303. https://doi.org/10.1038/sj.bdj.2014.204

8. Wang Z., Shen Y., Haapasalo M. Effectiveness of endodontic disinfecting solutions against young and old Enterococcus faecalis biofilms in dentin canals. J Endod. 2012;38(10):1376–1379. https://doi.org/10.1016/j.joen.2012.06.035

9. Vasudeva A., Sinha D.J., Tyagi S.P., Singh N.N., Garg P., Upadhyay D. Disinfection of dentinal tubules with 2% Chlorhexidine gel, Calcium hydroxide and herbal intracanal medicaments against Enterococcus faecalis: An in-vitro study. Singapore Dent J. 2017;38:39–44. https://doi.org/10.1016/j.sdj.2017.06.001

10. Fiorillo L., D’Amico C., Meto A., Mehta V., Lo Giudice G., Cervino G. Sodium hypochlorite accidents in endodontic practice: Clinical evidence and state of the art. J Craniofac Surg. 2024;35(7):e636–e645. https://doi.org/10.1097/SCS.0000000000010407

11. Pop R.M., Socaciu C., Pintea A., Buzoianu A.D., Sanders M.G., Gruppen H., Vincken J.P. UHPLC/PDA-ESI/MS analysis of the main berry and leaf flavonol glycosides from different Carpathian Hippophaë rhamnoides L. varieties. Phytochem Anal. 2013;24(5):484–492. https://doi.org/10.1002/pca.2460

12. Olas B. Sea buckthorn as a source of important bioactive compounds in cardiovascular diseases. Food Chem Toxicol. 2016;97:199–204. https://doi.org/10.1016/j.fct.2016.09.008

13. Michel T., Destandau E., Le Floch G., Lucchesi M.E., Elfakir C. Antimicrobial, antioxidant and phytochemical investigations of sea buckthorn (Hippophaë rhamnoides L.) leaf, stem, root and seed. Food Chemistry. 2012;131(3):754–760. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2011.09.029

14. Smida I., Pentelescu C., Pentelescu O., Sweidan A., Oliviero N., Meuric V. et al. Benefits of sea buckthorn (Hippophae rhamnoides) pulp oil-based mouthwash on oral health. J Appl Microbiol. 2019;126(5):1594–1605. https://doi.org/10.1111/jam.14210

15. Upadhyay N.K., Kumar R., Mandotra S.K., Meena R.N., Siddiqui M.S., Sawhney R.C., Gupta A. Safety and healing efficacy of Sea buckthorn (Hippophae rhamnoides L.) seed oil on burn wounds in rats. Food Chem Toxicol. 2009;47(6):1146–1153. https://doi.org/10.1016/j.fct.2009.02.002

16. Cushnie T.P.T., Lamb A.J. Antimicrobial activity of flavonoids. Int J Antimicrob Agents. 2005;26(5):343–356. https://doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2005.09.002 (Erratum in: Int J Antimicrob Agents. 2006;27(2):181. https://doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2005.12.002).

17. Daglia M. Polyphenols as antimicrobial agents. Curr Opin Biotechnol. 2012;23(2):174–181. https://doi.org/10.1016/j.copbio.2011.08.007

18. Desbois A.P., Smith V.J. Antibacterial free fatty acids: Activities, mechanisms of action and biotechnological potential. Appl Microbiol Biotechnol. 2010;85(6):1629–1642. https://doi.org/10.1007/s00253-009-2355-3

19. Suryakumar G., Gupta A. Medicinal and therapeutic potential of Sea buckthorn (Hippophae rhamnoides L.). J Ethnopharmacol. 2011;138(2):268–278. https://doi.org/10.1016/j.jep.2011.09.024

20. Gupta D., Kamat S., Hugar S., Nanjannawar G., Kulkarni R. A comparative evaluation of the antibacterial efficacy of Thymus vulgaris, Salvadora persica, Acacia nilotica, Calendula arvensis, and 5% sodium hypochlorite against Enterococcus faecalis: An in-vitro study. J Conserv Dent. 2020;23(1):97–101. Available at: https://journals.lww.com/jcde/fulltext/2020/23010/a_comparative_evaluation_of_the_antibacterial.19.aspx (accessed: 27.09.2025).

21. Priyadharsini V.J., Smilinegirija A.S., Paramasivam A. Enterococcus faecalis an emerging microbial menace in dentistry – An insight into the in-silico detection of drug resistant genes and its protein diversity. J Clin Diagn Res. 2018;12(10):GC06–GC10. https://doi.org/10.7860/JCDR/2018/36480.12155

22. Mohammadi Z., Abbott P.V. The properties and applications of chlorhexidine in endodontics. Int Endod J. 2009;42(4):288–302. https://doi.org/10.1111/j.1365-2591.2008.01540.x

23. Pundir S., Garg P., Dviwedi A., Ali A., Kapoor V.K., Kapoor D. et al. Ethnomedicinal uses, phytochemistry and dermatological effects of Hippophae rhamnoides L.: A review. J Ethnopharmacol. 2021;266:113434. https://doi.org/10.1016/j.jep.2020.113434

24. Riihinen K.R., Ou Z.M., Gödecke T., Lankin D.C., Pauli G.F., Wu C.D. The antibiofilm activity of lingonberry flavonoids against oral pathogens is a case connected to residual complexity. Fitoterapia. 2014;97:78–86. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2014.05.012

25. Hassan W., Mehta V., Singdha N.T., Karobari M.I. AI in root canal morphology: A detailed bibliometric analysis of research trends and global contributions. Clin Exp Dent Res. 2025;11(6):e70269. https://doi.org/10.1002/cre2.70269

26. Gonçalves M.F., Limoeiro A.G., Andrade R.F., Mendes É.B., Fraiha M.P.C., Fontes L.P. et al. Influence of endodontic access cavity design on root canal localization in mandibular first premolars using microscope and ultrasonic tips. Sci Rep. 2026;16:13447. https://doi.org/10.1038/s41598-026-43652-z

27. Santosh S., Babitha G.A., Holla K.S., Prakash S., Suresh K., Bhat G.K. Sea buckthorn against periodontitis: A clinical and microbiological study. International Journal of Oral Health Sciences. 2022;12(2):73–78. https://doi.org/10.4103/ijohs.ijohs_13_22

28. Durga Bhavani G., Rathod T., Parveen N., Tirupathi P., Dharavattu P., Sekhar V. et al. Assessment of the antimicrobial effectiveness of herbal root canal irrigants (Propolis, Triphala, and Aloe Vera) and chlorhexidine against enterococcus faecalis. Cureus. 2023;15(7):e41628. https://doi.org/10.7759/cureus.41628

29. Gupta A., Kumar R., Pal K., Singh V., Banerjee P.K., Sawhney R.C. Influence of sea buckthorn (Hippophae rhamnoides L.) flavone on dermal wound healing in rats. Mol Cell Biochem. 2006;290(1-2):193–198. https://doi.org/10.1007/s11010-006-9187-6

30. Godoy V.B., Limoeiro A.G., Sandini V., Mehta V., Nascimento W.M., Marceliano-Alves M.F.V., Frozoni M. Evaluation of postoperative pain frequency in single-session endodontic treatments with patency and foraminal enlargement. Clin Exp Dent Res. 2026;12(2):e70313. https://doi.org/10.1002/cre2.70313

31. Geetha S., Sai Ram M., Singh V., Ilavazhagan G., Sawhney R.C. Anti-oxidant and immunomodulatory properties of seabuckthorn (Hippophae rhamnoides) – An in vitro study. J Ethnopharmacol. 2002;79(3):373–378. https://doi.org/10.1016/s0378-8741(01)00406-8

32. N V., Bahadur S., Sharma A., Gupta N., Ahmed Almuntashiri A.A., Rajan R. et al. Antibacterial effect of various herbal root canal irrigants. Bioinformation. 2025;21(2):165–168. https://doi.org/10.6026/973206300210165

33. Assiri A.Y.K., Saafi J., Al-Moaleem M.M., Mehta V. Ferrule effect and its importance in restorative dentistry: A literature review. J Popul Ther Clin Pharmacol. 2022;29(4):e69–e82. https://doi.org/10.47750/jptcp.2022.977